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細胞計數液這樣操作效果更好

更新時間:2020-07-09      瀏覽次數:1069

細胞計數液這樣操作效果更好

 

細胞計數在細胞培養工作中,常需要了解細胞生活狀態和鑒別細胞死活,確定細胞接種濃度和數量以及了解細胞存活率和增殖度,如用酶消化制備的細胞懸液中細胞活力的鑒別,凍存細胞復蘇后的活力檢測等。細胞懸液制備后,常用活體染料臺盼藍對細胞進行染色,進行細胞計數。臺盼藍不能透過活細胞正常完整的細胞膜,故活細胞不著色。而死亡細胞的細胞膜通透性增高,可使染料進入細胞內而使細胞著色(藍色)。

 

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白細胞計數液
血小板計數液
嗜酸性粒細胞計數液

  

細胞計數一般用血細胞計數板,按白細胞計數方法進行計數,便于確定細胞的生活狀況。所需物品 0.4%臺盼藍溶液 無水乙醇或95%乙醇溶液 脫脂棉 相差顯微鏡 試管、吸管、毛細吸管 細胞計數板細胞計數方法

操作小貼士;

1. 將動物細胞用PBS制備成適當濃度的細胞懸液備用。

2. 用無水乙醇或95%乙醇溶液擦拭計數板后,用綢布擦凈,另擦凈蓋玻片一張,把蓋片覆在計數板上面。

3. 用滴管吸取0.4%臺盼藍染液,按1∶1比例加入細胞懸液中。從計數板邊緣緩緩滴入,使之充滿計數板和蓋片之間的空隙中。注意不要使液體流到旁邊的凹槽中或帶有氣泡,否則要重做。稍候片刻,將計數板放在低倍鏡下(10×10倍)觀察計數。

4. 按圖計算計數板的四角大方格(每個大方格又分16個小方格)內的細胞數。計數時,只計數完整的細胞,若聚成一團的細胞則按一個細胞進行計數。在一個大方格中,如果有細胞位于線上,一般計下線細胞不計上線細胞,計左線細胞不計右線細胞。二次重復計數誤差不應超過±5%。鏡下觀察,凡折光性強而不著色者為活細胞,染上藍色者為死細胞。

5. 計完數后,需換算出每ml懸液中的細胞數。由于計數板中每一方格的面積為0.01cm2,高為0.01cm,這樣它的體積為0.0001 cm3,即0.1 mm3。由于1ml=1000 mm3,所以每一大方格內細胞數×10,000=細胞數/ml,故可按下式計算:細胞懸液細胞數/ml=4個大格細胞總數/4×10,0006. 如計數前已稀釋,可再乘稀釋倍數。

6. 計數細胞后,計算細胞懸液濃度并求出存活與死亡細胞數的比例。 

注意事項1. 向計數板中滴細胞懸液時要干凈利落,加量要適當,過多易使蓋片漂移,或淹過蓋片則失敗,需重做;過少易出現氣泡;不理想時,應重做;2. 鏡下計數時,若方格中細胞分布明顯不均,說明細胞懸液混合不均勻,需重新將細胞懸液進行混合,再重新計數。3. 計數時,對于位于邊線或交界處的細胞/細胞團,遵循“計上不計下,計左不計右”的規則;4. 一個細胞團計做一個細胞。

 

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